Microscopi biològic sobre el volum de blocs de teixit
Un microscopi biològic amb un focus pot moure el focus cap amunt i cap avall per aconseguir una brillantor moderada i també es pot canviar l’obertura de l’obertura variable per aconseguir una brillantor moderada. Si la llum és del sol, es pot augmentar el focus adequadament i es pot ampliar adequadament l’obertura de la llum variable. Si la llum és massa forta, es pot baixar adequadament el focus i es pot reduir adequadament l’obertura de la intersecció. Si encara us sentiu enlluernador en aquesta situació, podeu optar per col·locar un filtre adequat al suport sota el punt de mira. Aquest roure pot aconseguir una brillantor que us satisfà. Per descomptat, l’ajust de les posicions superiors i inferiors del focus pot canviar la mida de l’obertura de la lectura de llum i seleccionar filtres adequats, que requereix un determinat període de pràctica i experiència.
Un tema molt important en la microscòpia biològica és el procés de mostreig i aïllament de cèl·lules. Després de l’assecat de congelació i l’incrustació de resina (FD), les seccions ultra-fines congelades s’han de processar amb cura per assegurar que el contingut de 65 elements de cada part no estigui danyat durant l’observació i l’anàlisi. A causa dels nombrosos passos i el elevat cost que comporta la microanàlisi de rajos X, és lamentable treure conclusions incorrectes si les cèl·lules analitzades estan danyades o mortes després de processar-se i en diversos passos. Les cèl·lules miocardiques separades pel tractament amb gelatinasa tenen dues formes, una té forma de canya llarga i l’altra és circular. Aquest últim es refereix a cèl·lules moribundes que es fan malbé durant el procés de separació cel·lular.
El contingut i la distribució dels electròlits en aquests dos tipus de cèl·lules són molt diferents a un microscopi biològic. La NA és molt elevada i K és extremadament baixa en cardiomiòcits circulars, i la concentració de CA en dendrites lineals és molt alta. Després de la verificació amb altres mètodes analítics, s'ha demostrat que la Na i K elevada a les cèl·lules circulars i la CA alta en els mitocondris són el resultat del dany de la membrana durant la separació cel·lular. El mètode de fixació en fred per a les cèl·lules i els teixits sovint implica que s’acaba primer i després emmagatzemar -les en nitrogen líquid. La fixació d’aturada és crucial per a l’efecte de preservació. Les cèl·lules vives o els teixits frescos són riques en aigua i, quan s’abandonen, les parts de les cèl·lules o teixits que entren en contacte directe amb el refrigerant (sobretot quan s’utilitzen nitrogen líquid per refrigerar) sovint es congelen i s’arreglen primer, formant una “closca” que impedeix que la part central de les cèl·lules es tritura i s’arregis. Per tant, quan es realitza microanàlisi de raigs X, sovint es troba que existeixen cristalls de gel a la part central de les cèl·lules més grans. Per evitar que es produeixi aquesta situació, com a refrigerant s’utilitza una substància amb un punt de fusió superior al nitrogen líquid, però inferior a 806C. Hi ha moltes d’aquestes substàncies, però són fàcils d’obtenir i la més assequible és propà concentrat (punt d’ebullició 42.120C, punt de fusió 187,10C, pes molecular 44,1), que també té una velocitat de refrigeració ràpida. Però el seu desavantatge és que és inflamable.
